Vanaf 1 januari 2018 is Verordening (EU) 2015/2238 van het Europees Parlement en de Raad van 25 november 2015 van kracht geworden, waarbij het concept van “nieuwe voedingsmiddelen” werd geïntroduceerd, inclusief insecten en hun delen. Een van de meest gebruikte insectensoorten zijn: meelwormen ( Tenebrio molitor ), huiskrekels ( Aceta domesticus ), kakkerlakken (Blattodea) en treksprinkhanen ( Locusta migrans ). In deze context is de ondoorgrondelijke kwestie de rol van eetbare insecten bij het overbrengen van parasitaire ziekten die aanzienlijke verliezen in de voortplanting ervan kunnen veroorzaken en een bedreiging kunnen vormen voor mens en dier. Het doel van deze studie was het identificeren en evalueren van de ontwikkelingsvormen van parasieten die eetbare insecten koloniseren in huishoudelijke boerderijen en dierenwinkels in Centraal-Europa en het potentiële risico van parasitaire infecties voor mens en dier te bepalen. Het experimentele materiaal bestond uit monsters van levende insecten (imagines) van 300 huishoudelijke boerderijen en dierenwinkels, waaronder 75 meelwormkwekerijen, 75 huiskrekelboerderijen, 75 sissende kakkerlakkwekerijen in Madagaskar en 75 migrerende sprinkhanenkwekerijen. Parasieten werden gedetecteerd in 244 (81,33%) van de 300 (100%) onderzochte insectenkwekerijen. In 206 (68,67%) van de gevallen waren de geïdentificeerde parasieten alleen pathogeen voor insecten; in 106 (35,33%) gevallen waren parasieten potentieel parasitair voor dieren; en in 91 (30,33%) gevallen waren parasieten potentieel pathogeen voor de mens. Eetbare insecten zijn een onderschat reservoir van menselijke en dierlijke parasieten. Ons onderzoek wijst op de belangrijke rol van deze insecten in de epidemiologie van parasieten die pathogeen zijn voor gewervelde dieren. Uitgevoerd parasitologisch onderzoek suggereert dat eetbare insecten de belangrijkste parasietvector kunnen zijn voor gedomesticeerde insectenetende dieren. Volgens onze studies zou het toekomstige onderzoek zich moeten richten op de noodzaak van constante monitoring van bestudeerde insectenkwekerijen op ziekteverwekkers, waardoor de voedsel- en voederveiligheid toeneemt.

Invoering

De groeiende vraag naar licht verteerbaar en voedzaam voedsel heeft bijgedragen aan de opkomst van nieuwe voedselbronnen in de landbouwverwerking. Eetbare insecten zijn zo’n categorie onderbenutte voedingsmiddelen met een hoge voedingswaarde [  ]. Insecten worden gekweekt voor directe consumptie en voor gebruik bij de productie van voedsel en diervoeders [  ]. Het concept van “nieuwe voedingsmiddelen”, inclusief insecten en hun delen, is geïntroduceerd door Verordening (EU) 2015/2238 van het Europees Parlement en de Raad van 25 november 2015 betreffende nieuwe voedingsmiddelen, die op 1 januari 2018 in werking is getreden. De groeiende populariteit van exotische huisdieren heeft ook de vraag naar nieuwe voedingsmiddelen vergroot. Eetbare insecten worden echter vaak geïnfecteerd door ziekteverwekkers en parasieten, die aanzienlijke productieverliezen veroorzaken [  ]. Deze ziekteverwekkers vormen ook een indirecte bedreiging voor mensen, vee en exotische dieren. De meerderheid van de insectenkwekerijen in de wereld zijn huishoudelijke bedrijven, en in Europa worden eetbare insecten zelden op grote schaal geproduceerd. In de Europese Unie is entomofagie zeldzaam en wordt het beschouwd als een cultureel taboe [  ]. Er worden meer dan 1900 soorten insecten als eetbaar beschouwd. De meest populaire eetbare insecten zijn onder meer meelwormen ( Tenebrio molitor ) [  ], huiskrekels ( Aceta domesticus ) [  ], kakkerlakken (Blattodea) [  ] en treksprinkhanen ( Locusta migrans ) [  ].

Meelwormen zijn kevers uit de familie Tenebrionidae. Volwassen kevers zijn over het algemeen 13-20 mm lang en larven hebben een lengte van ongeveer 30 mm. Tijdens hun korte levenscyclus van 1-2 maanden leggen vrouwtjes ongeveer 500 eieren. Een van de grootste meelwormleveranciers ter wereld is HaoCheng Mealworm Inc., dat 50 ton levende insecten per maand produceert en 200.000 ton gedroogde insecten per jaar exporteert [  ]. Meelwormen worden gebruikt in de voeding van mens en dier en zijn een populaire voedselbron voor exotische huisdieren, waaronder reptielen en insecteneters. De voedingswaarde van meelwormlarven is vergelijkbaar met die van vlees en kippeneieren [  ]. Meelwormen zijn gemakkelijk op te slaan en te vervoeren. Ze zijn rijk aan goed beschikbare voedingsstoffen en worden beschouwd als een veelbelovende voedingsbron voor de pluimvee- en viskweek. Meelwormen kunnen ook worden toegediend aan huisdieren en vee [  ]. De populariteit van de consumptie van meelwormen door mensen neemt vooral in Europa toe. Meelwormen breken biologisch afval en piepschuim effectief af [  ]. De meest voorkomende meelwormparasieten zijn Gregarine spp., Hymenolepis diminuta en mijten van de familie Acaridae. Meelwormen zijn modelinsecten in parasitologisch onderzoek [  –  ].

De huiskrekel ( A. domesticus ) heeft een lengte tot 19 mm en de levenscyclus bedraagt ​​2-3 maanden. Het is een voedselbron voor reptielen, amfibieën en in gevangenschap gefokte spinachtigen, waaronder spinnen van de familie Theraphosidae. Huiskrekels worden door mensen geconsumeerd in poedervorm of als eiwitextracten [  ,  ]. Hele krekels worden in Thailand direct geconsumeerd [  ]. Deze insecten worden vaak besmet door Nosema spp., Gregarine spp. en Steinernema spp.

Kakkerlakken van de orde Blattodea omvatten de Duitse kakkerlak ( Blattella germanica ), Amerikaanse kakkerlak ( Periplaneta americana ), Cubaanse gravende kakkerlak ( Byrsotria fumigata ), Madagaskar sissende kakkerlak ( Gromphadorhina portentosa ), gespikkelde kakkerlak ( Nauphoeta cinerea ), Turkestaanse kakkerlak ( Shelfordella lateralis ) en oosterse kakkerlak ( Blatta Orientalis ). Kakkerlakken kunnen tot 12 maanden leven, en de grootste exemplaren bereiken een lengte van maximaal 8 cm. Kakkerlakken worden steeds populairder in de menselijke voeding en maken deel uit van de lokale keuken in verschillende delen van de wereld [  ].

Treksprinkhanen zijn leden van de familie Acrididae, orde Orthoptera. Insecten worden tot 9 cm lang en leven maximaal 3 maanden. Sprinkhanen worden geconsumeerd door amfibieën, reptielen en mensen, voornamelijk in Afrika en Azië. Sprinkhanen bevatten tot 28% eiwit en 11,5% vet, inclusief tot 54% onverzadigde vetten [  ]. Nosema spp. en Gregarine spp. zijn de meest voorkomende sprinkhanenparasieten [  ].

Het doel van deze studie was het identificeren en evalueren van de ontwikkelingsvormen van parasieten die eetbare insecten koloniseren in huishoudelijke boerderijen en dierenwinkels in Centraal-Europa en het potentiële risico van parasitaire infecties voor mens en dier te bepalen.

Materialen

Het experimentele materiaal bestond uit monsters van levende insecten (imagines) van 300 huishoudelijke boerderijen en dierenwinkels, waaronder 75 meelwormkwekerijen, 75 huiskrekelboerderijen, 75 sissende kakkerlakkwekerijen in Madagaskar en 75 migrerende sprinkhanenkwekerijen uit Tsjechië, Duitsland, Litouwen, Polen, Slowakije en Oekraïne. Eigenaren/fokkers van huishoudelijke boerderijen en culturen uit dierenwinkels gaven toestemming om het onderzoek uit te voeren op hun insectenkwekerijen. De onderzoeken zijn uitgevoerd in de jaren 2015-2018. Er werden maximaal 3 boerderijen getest vanaf één locatie (bijvoorbeeld stad). Er werd landbouwvoorraad aangekocht bij leveranciers in Europa, Azië en Afrika. Van elke meelworm- en krekelkwekerij werden veertig insecten verkregen en deze werden samengevoegd in 4 monsters van elk 10 insecten. Van elke kakkerlakken- en sprinkhanenkwekerij werden tien insecten bemonsterd en afzonderlijk geanalyseerd.

Methodologie

Insecten werden geïmmobiliseerd door gedurende 20 minuten een koude coma te veroorzaken bij een temperatuur van -30°C. De winterslaap werd als effectief beschouwd wanneer benen, onderkaken en antennes niet reageerden op tactiele stimuli. Overwinterende insecten werden onthoofd en ontleed om spijsverteringskanalen te oogsten. De spijsverteringskanalen werden vermalen in een zeef en onderzocht volgens de flotatiemethode van Fulleborn met Darling’s oplossing (50% verzadigde NaCl-oplossing en 50% glycerol). De monsters werden 5 minuten bij 3500 x gecentrifugeerd. Van elk monster werden drie exemplaren verkregen en deze werden onderzocht onder een lichtmicroscoop (bij een vergroting van 200x, 400x en 1000x). De overige lichaamsdelen werden onderzocht op de aanwezigheid van parasitaire larven onder de Leica M165C stereoscopische microscoop (bij een vergroting van 7,2x-120x). De overige lichaamsdelen werden geanalyseerd volgens de door Kirkor voorgestelde methode met enkele aanpassingen, door lichaamsdelen te vermalen in een vijzel met een overeenkomstige hoeveelheid water en 0,5 ml ether. De resulterende suspensies werden in reageerbuizen gefiltreerd om grote deeltjes te scheiden en werden gedurende 5 minuten bij 3500x gecentrifugeerd. Na het losmaken van de puinplug werden de bovenste drie suspensielagen weggegooid. Er werden drie monsters verkregen en deze werden geanalyseerd volgens de hierboven beschreven procedure. Parasieten werden geïdentificeerd op geslacht/soortniveau op basis van morfologische en morfometrische parameters met behulp van een Olympus-beeldacquisitiesysteem en het Leica Application Suite-programma op basis van de referentiebronnen in Pubmed [  –  ]. Parasieten werden tot op soortniveau geïdentificeerd door middel van Ziehl-Neelsen-kleuring [  ]. De eigenaren van boerderijen waar menselijke parasieten werden aangetroffen, kregen het advies hun voorraad te elimineren. Boereneigenaren werden ondervraagd met behulp van een vragenlijst om informatie te verkrijgen over de herkomst van insecten (om te bepalen of het bestand werd aangevuld met insecten van andere bedrijven, of het bedrijf een gesloten leefgebied was, of het bestand alleen uit Europa werd betrokken, of ook uit Azië/Afrika), insectenvoeding (of insecten speciaal voer, verse producten, keukenafval of lokaal verzamelde voedselbronnen kregen), contact met andere dieren of dierlijke uitwerpselen.

statistische analyse

Voor iedere insectensoort werd de prevalentie van parasitaire soorten bepaald. De gegevens werden getest op normale verdeling met de Kolmogorov-Smirnov-test. De aannames van lineariteit en normaliteit werden vóór statistische analyse getest. De lineariteit werd geanalyseerd op basis van de tweedimensionale verdeling van de geëvalueerde variabelen met behulp van histogrammen en normale waarschijnlijkheidsgrafieken van de residuen. De significantie van de correlaties tussen insectensoorten en vragenlijstgegevens werd geanalyseerd in een logistisch regressiemodel, waarbij de afhankelijke variabele dichotoom was (0 of 1, aan-/afwezigheid van parasieten) en de onafhankelijke variabelen waren: herkomst van insecten (insecten gekocht in Europa alleen/insecten geïmporteerd uit Azië en Afrika), rotatiesysteem voor insectenbestand (alleen insecten van het geëvalueerde bedrijf – nauwe rotatie/het bedrijf werd aangevuld met insecten van andere bedrijven – open rotatie), voeding (insecten kregen alleen verse producten of gespecialiseerd voer/ insecten gevoederd met keukenafval) en direct/indirect contact met dieren (ja/nee). De correlaties tussen de geïdentificeerde parasieten werden geanalyseerd met behulp van Yule’s Q en Cramer’s V, afhankelijk van het aantal geëvalueerde variabelen. De onderzochte associaties waren zwak wanneer de waarde van V/Q de 0 benaderde, en de correlaties waren sterker wanneer de V/Q +1/-1 benaderde. De resultaten werden statistisch verwerkt in het Statistica 13.1 programma met een medische applicatie van StatSoft.

Prevalentie

Parasitaire ontwikkelingsvormen werden gedetecteerd in 244 (81,33%) van de 300 (100%) onderzochte insectenkwekerijen. In 206 (68,67%) van de gevallen waren de geïdentificeerde parasieten alleen pathogeen voor insecten; in 106 (35,33%) gevallen waren parasieten potentieel parasitair voor dieren; en in 91 (30,33%) gevallen waren parasieten potentieel pathogeen voor de mens. Nosema spp. sporen werden gedetecteerd in 27 (36,00%) krekelboerderijen en 35 (46,67%) sprinkhanenboerderijen. De aanwezigheid van Cryptosporidium spp. werd waargenomen op 12 (16%) meelwormkwekerijen, 5 (6,67%) krekelkwekerijen, 13 (17,33%) kakkerlakkenkwekerijen en 4 (5,33%) sprinkhanenkwekerijen. Vierenveertig (58,67%) meelwormkwekerijen, 30 (40,00%) krekelkwekerijen, 57 (76%) kakkerlakkenkwekerijen en 51 (68,00%) sprinkhanenkwekerijen waren besmet met Gregarine spp., waaronder Steganorhynchus dunwodyii , Hoplorhynchus acanthatholius , Blabericola haasi , Gregarina blattarum , G. niphadrones , Gregarina cuneata en Gregarina polymorpha . Isospora spp. werden gedetecteerd op 7 (9,33%) meelwormkwekerijen, 4 (5,33%) krekelkwekerijen, 9 (12,00%) kakkerlakkenkwekerijen en 8 (10,67%) sprinkhanenkwekerijen. Elf (14,67%) meelwormkwekerijen, 13 (17,33%) kakkerlakkenkwekerijen en 9 (12,00%) sprinkhanenkwekerijen waren besmet met Balantidium spp. waaronder B. coli en B. blattarum . De aanwezigheid van Entamoeba spp., waaronder E. coli , E. dispar , E. hartmanii en E. histolytica , werd vastgesteld op 9 (12%) meelwormbedrijven, 14 (18,67%) kakkerlakkenbedrijven en 4 (5,33%) sprinkhanenbedrijven. . Zeventien (22,67%) kakkerlakkenkwekerijen werden gekoloniseerd door Nyctotherus spp., waaronder N. ovalis en N. periplanetae . Lintwormcystercoïden, waaronder Hymenolepis nana , H. diminuta en Raillietina spp., werden gedetecteerd op 9 (12%) meelwormkwekerijen, 3 (4%) krekelkwekerijen, 4 (5,33%) kakkerlakkenkwekerijen en 3 (4,00%) sprinkhanenkwekerijen. Nematoden van de orde Gordiidea koloniseerden 6 (8,00%) krekel- en sprinkhanenboerderijen. Hammerschmidtiella diesigni werd aangetroffen op 35 (46,67%) kakkerlakkenkwekerijen. Steinernema spp. werd geïdentificeerd in 22 (29,33%) krekelboerderijen, en Pharyngodon spp. in 14 (18,67%) sprinkhanenboerderijen. De aanwezigheid van Physalopteraspp. werd waargenomen op 4 (5,4%) meelwormkwekerijen, 2 (2,67%) krekelkwekerijen, 9 (12,00%) kakkerlakkenkwekerijen en 7 (9,33%) sprinkhanenkwekerijen. Vijf (6,67%) meelwormkwekerijen en 7 (9,33%) kakkerlakkenkwekerijen waren besmet met Spiruroidea. Thelastomidae spp. werd gedetecteerd in 10 (13,33%) krekel- en sprinkhanenkwekerijen. Thelastoma spp. werd geïdentificeerd in 58 (77,33%) kakkerlakkenkwekerijen. Acanthocephala werd waargenomen op 2 (2,67%) meelwormbedrijven en 3 (4,00%) kakkerlakkenbedrijven. Twee (2,67%) kakkerlakkenkwekerijen waren besmet met Pentastomida. De aanwezigheid van Acaridae, waaronder huisstofmijten, werd waargenomen op 35 (46,67%) meelwormkwekerijen, 15 (20,00%) kakkerlakkenkwekerijen en 7 (9,33%) sprinkhanenkwekerijen. In de groep monsters verzameld op meelwormkwekerijen kwam Cryptosporidium spp. werden waargenomen in 37 (12,33%) monsters, Gregarine spp. werden gedetecteerd in 99 (33,00%) monsters, Isospora spp. – in 12 (4%) monsters, Entamoeba spp. – in 12 (4,00%) monsters, Balantidium spp. – in 14 (4,67%) monsters, cysticercoïden – in 18 (6,00%) monsters, Pharyngodon spp. – in 10 (3%) monsters, Physaloptera spp. – in 15 (5,00%) monsters, Spiruroidea – in 6 (2,00%) monsters, Acanthocephala spp. – in 2 (0,67%) ), en Acaridae in 80 (26,67%) monsters. In de groep monsters verzameld op krekelboerderijen was Nosema spp. werden geïdentificeerd in 74 (24,67%) monsters, Cryptosporidium spp. – in 5 (1,67%) monsters Isospora spp. – in 8 (2,67%) monsters, Gregarine spp. – in 72 (24,00%) monsters, cysticercoïden – in 4 ( 1,33%) monsters, Physaloptera spp. – in 4 (1,33%) monsters, Steinernema spp. – in 11 (3,67%) monsters, en nematoden van de orde Gordiidea – in 19 (6,33%) monsters. In de groep monsters afkomstig van kakkerlakkenkwekerijen bleek de aanwezigheid van Cryptosporidium spp. werd bepaald in 89 (11,87%) monsters, Gregarine spp. – in 236 (31,47%) monsters, Isospora spp. – in 16 (2,13%) monsters, Nyctotherus spp. – in 57 (7,60%) monsters, Entamoeba spp. – in 34 (4,53%) monsters, Balantidium spp. – in 35 (4,67%) monsters, cysticercoïden – in 4 (0,53%) monsters, Pharyngodon spp. – in 20 (2,67%) monsters, Physaloptera spp. – in 23 (3,07%) %) monsters, Spiruroidea – in 14 (1,87%) monsters, Thelastoma spp. – in 270 (36,00%) monsters, H. diesigni – in 143 (19,07%) monsters, Acanthocephala spp. – in 5 (0,67%) monsters, Pentastomida spp. – in 5 (0,67%) monsters, en Acaridae – in 29 (3,87%) monsters. Op sprinkhanenkwekerijen zijn de volgende parasieten aangetroffen: Nosemaspp. – in 125 (16,67%) monsters, Cryptosporidium spp. – in 13 (1,73%) monsters, Gregarine spp. – in 180 (24,00%) monsters, Isospora spp. – in 15 (2,00%) monsters, Entamoeba spp. in 9 (1,20%) monsters, Balantidium spp. – in 14 (1,87%) monsters, cysticercoïden – in 15 (2,00%) monsters, Physaloptera spp. – in 17 (2,27%) monsters, Steinernema spp. – in 31 (4,13%) %) monsters, nematoden van de orde Gordiidea – in 7 (0,93%) monsters, en Acaridae – in 31 (4,13%) monsters. Gedetailleerde resultaten van het parasitologisch onderzoek zijn geplaatsttafel 1.

tafel 1

Type/soort en ontwikkelingsvormen van parasieten aangetroffen in de onderzochte insecten in de onderzochte collectieve/individuele monsters, afhankelijk van de plaats van detectie.
Parasiet (ontwikkelingsvormen) Meelwormkever Huiskrekel Sissende kakkerlak uit Madagaskar Migrerende sprinkhaan
gt rb gt rb gt rb gt rb
Nosema spp. (sporen) 74 125
Cryptosporidium spp. (oocysten) 31 10 5 2 57 35 13 4
Gregarine spp. (oöcysten, sporozoïeten) 99 72 236 180
Isospora spp. (oocysten) 3 12 1 8 6 16 1 15
Balantidium spp. (amoeben, cysten) 1 14 29 8 5 14
Entamoeba spp. (amoeben, cysten) 3 11 30 7 1 9
Nyctotherus spp. (amoeben, cysten) 57 2
Cestoda (eieren, cysticercoïden) 8 22 4 3 4 2 15
Gordiidae spp (cysten, juvenielen) 19 16
H. diesigni (volwassen vormen, eieren) 143
Pharyngodon spp. (L3 larven) 13 22
Physaloptera spp. (L3 larven) 19 4 42 17
Spiruroidea (L3-larven) 8 14
Thelastomatidae (volwassen vormen, eieren) 47 31
Steinernema spp. (volwassen vormen) 11 17
Thelastoma spp. (volwassen vormen, eieren) 270
Acanthocephala spp. (cystacanthen) 2 5
Pentastomida (nimfen) 5
Acaridae (eieren, nimfen, volwassen vormen) 4 80 2 29 1 31

gt – maag-darmkanaal; rb – rest van het lichaam

Waarschijnlijkheid van het optreden van parasieten

Het risico op Cestoda-, Acanthocephala- en Acaridae-infecties was aanzienlijk hoger bij insecten geïmporteerd uit Afrika en Azië dan bij insecten gekocht bij Europese leveranciers. Bedrijven waarvan het bestand werd aangevuld met insecten van andere bedrijven werden vaker gekoloniseerd door Nosema spp., Isospora spp., Cryptosporidium spp., Entamoeba spp., Cestoda, Pharyngodon spp., Gordius spp., Physaloptera spp., Thelastoma spp. en H. diesigni dan gesloten boerderijen. Het risico op infectie met Cryprosporidium spp., Gregarine spp., Balantidium spp., Entamoeba spp., Steinernema spp., Gordiidea, H. diesigni en Acaridae was hoger bij insecten die gevoederd werden met keukenafval en lokaal verzamelde voedselbronnen dan bij insecten die alleen verse producten of gespecialiseerde voeding kregen. feeds. Insecten die direct of indirect in contact kwamen met dieren liepen een hoger risico op blootstelling aan Isospora spp., Cryptosporidium spp., Cestoda, Pharyngodon spp., Physaloptera spp., Thelastoma spp. en H. diesigni , maar met een lager risico op blootstelling aan Nyctotherus spp. De statistisch significante resultaten van logistische regressie werden geplaatst intafel 2.

tafel 2

Logistiek regressiemodel, dat statistisch significante relaties toont tussen de parasietsoorten en de oorsprong van insecten, het systeem van de insectenbestandrotatie, het type voeding en het contact met dieren.
Nosema spp. rotatie <0,000001 2.28 0,18 33,99 <0,000001 2,90 2.03-4.14
Isospora spp. rotatie 0,000043 28.88 0,31 10.45 uur 0,0012 2,74 1,49-5,06
dieren 12.03 0,32 3,95 0,047 1,87 1.01-3.48
Cryprosporidium spp. rotatie 0,00001 14.54 0,22 15.53 0,00002 5.11 1.03-14.65
voeden 17.76 0,19 19.22 0,0013 10.21 0,81-6,45
dieren 4.03 0,34 7.81 0,001 3.62 1,95-12,83
Gregarine spp. voeden 0,000001 11.85 0,11 21.40 uur 0,000004 1,65 1.33-2.04
Nyctotherus spp. dieren 0,020 49.02 0,29 8.29 0,004 0,44 0,25-0,77
Balantidium spp. voeden 0,000001 6.43 0,32 15.63 0,000072 3.52 1,69-6,57
Entamoeba spp. rotatie 0,000022 4,50 0,54 5,78 0,016 0,27 0,095-0,79
voeden 3.58 0,34 11.03 0,000098 3.13 1,60-6,13
Cestoda oorsprong 0,000064 11.66 1.06 4.71 0,03 10.07 1,25-81,05
rotatie 8.38 4.46 4.59 0,035 2,92 1,08-7,92
dieren 2.48 1,50 6.46 0,011 18.54 1,95-177,14
Pharyngodon spp. rotatie 0,000001 8.24 0,63 4.25 0,040 0,27 0,078-0,93
dieren 11.21 0,73 14.10 0,00017 15.73 3,73-66,31
Steinernema spp. voeden 0,047 15.26 0,28 5.46 0,019 1,94 1.11-3.39
Gordiidae rotatie 0,000001 1.44 0,41 5,87 0,02 2.69 1,21-5,97
voeden 4,89 1.03 18.67 0,000016 87,54 11.51-665.54
Physaloptera spp. rotatie 0,000001 12.28 0,36 8.62 0,0033 0,35 0,17-0,70
dieren 7.45 0,29 28.18 <0,000001 4,75 2,67-8,45
Thelastoma spp. rotatie 0,00087 33.09 0,19 4.61 0,031 1,51 1.04-2.21
dieren 9.44 0,16 4,89 0,0002 1.26 1,26-2,43
Hammerschmidtiella diesigni rotatie <0,000001 11.15 0,22 14.09 0,00017 2.32 1,49-3,59
voeden 7,64 0,22 12.41 0,00042 2.18 1,41-3,73
dieren 5,82 0,20 7.47 0,0062 1,75 1,17-2,61
Acanthocephala oorsprong 0,00001 14.23 0,55 5.11 0,02 9.11 1.67-73.01
Acaridae oorsprong 0,000001 5,89 0,20 13.72 0,00021 2.08 1.41-3.06
voeden 7.43 0,20 11.52 0,00069 1,99 1,34-2,96

2 —Chi-kwadraattoets; W —Wald-statistiek; 95% BI -95% betrouwbaarheidsinterval; Herkomst: 0 – exemplaren in de fokkerij kwamen uit Europa, 1 – fokdieren geïmporteerd uit Azië of Afrika; Rotatie: 0 – individuen van boerderijen met een gesloten rotatie van de dieren, 1 – individuen van boerderijen met een open rotatie van de dieren; Voeding: 0 – insecten gevoed met verse producten of voedsel, 1 – insecten gevoed met afval; Dieren: 0 – geen contact met dieren, 1 – contact met dieren. H.diesigni — Hammerschmidtiella diesigni .

Muntvasies

Er werden significante correlaties waargenomen tussen de aanwezigheid van Nosema spp. en Isospora spp. (V = 0,75), Gregarine spp. (Q = −0,27) Steinernema spp. (Q = 0,42) en Gordiidae spp. (Q = 0,45). De aanwezigheid van Isospora spp. was ook significant gecorreleerd met Gregarine spp. (Q = -0,22), cestoda (Q = 0,63), Gordiidae spp. (Q = 0,73) Thelastoma spp. (Q=0,96). Het voorkomen van Nyctotherus spp. was gecorreleerd met Spiruroidea (Q = 0,55), Thelastoma spp. (Q = 0,52) en H. diesigni (Q = 0,18). Er werden correlaties waargenomen tussen Gregarine spp. en Hymenolepis diminuta (Q = 0,48), Pharyngodon spp. (Q = 0,30), Steinernema spp. (Q = 0,33), Physaloptera spp. (Q = 0,32), Spiruroidea. (Q = 0,44), Thelastoma spp. (Q = 0,51), H. diesigni (Q = 0,31) en Acanthocephala (Q = 0,44). De aanwezigheid van Cryptosporidium spp. was significant gecorreleerd met Balantidium spp. (Q = 0,21), Entamoeba spp. (Q = 0,33), Nyctotherus spp. (Q = −0,41), H. diesigni (Q = 0,49) en Acaridae (Q = 0,17).

Discussie

Door het ontbreken van een registratieplicht kunnen wij op dit moment het exacte aantal van dergelijke bedrijven in het onderzochte gebied niet inschatten. Het aantal voor het experiment verkregen bedrijven is het resultaat van een indicatief berekend minimum aantal monsters. Om de meest betrouwbare resultaten uit één enkele locatie (bijv. stad) te krijgen, hebben we maximaal 3 boerderijen getest. De selectie van insectensoorten voor onderzoek vloeide voort uit de verspreiding van deze dieren onder fokkers. Indien wij hebben aangetoond dat insecten van dezelfde leverancier afkomstig zijn, hebben wij geen verder onderzoek voortgezet.

Enquêtevragen over de geteste insectenkwekerijen houden verband met de waargenomen activiteiten van fokkers. Veredelaars die hun bedrijf willen opzetten of uitbreiden, bestellen insecten vaak uit de landen van herkomst of uit plaatsen waar de import van dergelijk voedsel goedkoper is dan uit Europa. Naar onze mening vormt een dergelijk fenomeen een grote bedreiging vanwege het feit dat er een risico bestaat dat dieren uit de omgeving worden gevangen en daardoor nieuwe parasieten worden geïntroduceerd, zowel pathogeen voor insecten als voor mens en dier. Sommige amateurfokkers zijn niet geïnteresseerd in de kwaliteit van het voer dat op de boerderij wordt geïntroduceerd. Ze halen insectenvoer uit de omgeving (groenvoer, wilde fruitbomen) of gebruiken restjes van het voeren van andere dieren. Eetbare insecten kunnen ook direct of indirect contact hebben met dieren. Tot de praktijken behoren onder meer het opnieuw deponeren van insecten op boerderijen nadat het dier ze niet heeft opgegeten. Deze insecten die zich door de leefomgeving van dieren (bijv. terraria) verplaatsen, kunnen op mechanische wijze potentiële ziekteverwekkers introduceren die specifiek zijn voor dieren.

Tijdens het onderzoek op individuele boerderijen hebben we onethische praktijken van individuele fokkers waargenomen, zoals het voeren van insecten met uitwerpselen van dieren uit een dierenwinkel, het voeren van insecten met lijken van kleinere dieren, of het voeren van insecten met beschimmeld voedsel en zelfs rauw vlees. Deze praktijken verminderen de kwaliteit van het eindproduct aanzienlijk en ondermijnen de microbiologische/parasitologische veiligheid van dergelijk voedsel. Momenteel bestaat er echter geen regelgeving met betrekking tot de zoöhygiënische omstandigheden en het welzijn van deze dieren als potentiële voedseldieren. Hoewel het onderzoek werd uitgevoerd op amateur-insectenkwekerijen, bleken de meeste geen ernstige gebreken te vertonen. Het kweken van eetbare insecten op plaatsen die niet voor dit doel zijn bedoeld (huizen) kan tot extra gevaar voor de mens leiden. In de loop van het onderzoek hebben we individuele gevallen geregistreerd van de verspreiding van insecten vanaf boerderijen, wat resulteerde in kamerbesmettingen, bijvoorbeeld. door kakkerlakken of krekels. Een ander voorbeeld is de mogelijkheid van overdracht van parasieten zoals Cryptosporidium spp. op aerogenetisch gebied van de mens, dus als de boerderijen goed onbeschermd zijn of als er een gebrek aan hygiëne is bij contact met insecten, kunnen dergelijke invasies plaatsvinden.

Parasieten die pathogeen zijn voor insecten

De geanalyseerde boerderijmonsters werden gekoloniseerd door ontwikkelingsvormen van parasieten die specifiek zijn voor insecten, waaronder Nosema spp., Gregarine spp., Nyctotherus spp., Steinernema spp., Gordiidae, H. diesigni , Thelastomidae en Thelastoma spp. Deze ziekteverwekkers vormen de meest voorkomende parasitaire flora, en massale infecties kunnen de gezondheid van insecten in gevaar brengen en de winsten van landbouwbedrijven verminderen [  ,  ]. Volgens Van der Geest et al. [  ] en Johny et al. [  ], de bovengenoemde ziekteverwekkers zijn geïmpliceerd als pseudo-parasieten van mens en dier. De impact van insectspecifieke parasieten op mensen is echter nog niet volledig opgehelderd. Pong et al. [  ] voerde aan dat Gregarine spp., een parasiet die specifiek is voor kakkerlakken, astma bij mensen zou kunnen veroorzaken. De resultaten van het in ons onderzoek uitgevoerde onderzoek geven aan dat insectenkweek de menselijke blootstelling aan ziekteverwekkers en allergenen kan vergroten [  ,  ].

Nosemosis is een ziekte die wordt veroorzaakt door microsporidiaanse parasieten en kan de gezondheid van krekels en sprinkhanen in gevaar brengen. Nosema-parasieten controleren echter ook krekel- en sprinkhanenpopulaties in de natuurlijke omgeving [  –  ]. Lange en Wysiecki [  ] ontdekten dat Nosema locustae door wilde sprinkhanen kan worden overgedragen tot een afstand van maximaal 75 km. Deze parasiet wordt ook gemakkelijk overgedragen tussen individuele insecten, wat kan bijdragen aan de verspreiding van infecties in insectenkwekerijen. Johnson en Pavlikova [  ] rapporteerden een lineaire correlatie tussen het aantal Nosema spp. sporen bij sprinkhanen en een afname van de drogestofconsumptie. De resultaten van ons onderzoek geven aan dat Nosema spp. infecties kunnen de winsten in de insectenkweek verminderen.

Gregarine spp. zijn parasitaire protisten die de spijsverteringskanalen en lichaamsholten van ongewervelde dieren koloniseren. Volgens Kudo [  ] zijn Gregarines niet-pathogene commensale micro-organismen, maar recent onderzoek geeft aan dat deze protisten pathogeen zijn voor insecten. Deze micro-organismen maken gebruik van de voedingsstoffen die door de gastheer worden opgenomen, brengen de immuunfunctie van de gastheer in gevaar en beschadigen de wanden van gastheercellen [  ]. Grote plagen kunnen bij insecten leiden tot darmverstoppingen [  ]. Lopes en Alves [  ] ontdekten dat kakkerlakken besmet met Gregarine spp. werden gekenmerkt door gezwollen buikspieren, langzamere bewegingen, verdonkerde lichamen en een bedorven geur die wijst op bloedvergiftiging. Er werd ook gevonden dat gregarines de voortplanting in gevaar brengen, de levenscyclus verkorten en de sterfte onder insecten verhogen [  ,  ,  ]. Uit een onderzoek naar libellen bleek dat Gregarine spp. kan het vetgehalte en de spierkracht bij insecten verminderen [  ]. Johny et al. [  ] toonde aan dat metronidazol en griseofluvin de Gregarine spp. kunnen verminderen. telt bij insecten. De resultaten gepresenteerd door Johny et al. [  ] kan worden gebruikt om strategieën voor parasietbeheer te ontwikkelen en de negatieve effecten van Gregarine spp. in insectenkwekerijen. Lopes en Alves [  ] toonden aan dat kakkerlakken besmet met Gregarine spp. waren gevoeliger voor Metarhizium anisopliae en triflumuron, wat zou kunnen impliceren dat zieke insecten gevoeliger zijn voor andere pathogenen. Een overzicht van de literatuur suggereert dat Gregarine spp. kan de gezondheid van gekweekte insecten negatief beïnvloeden [  ,  ,  ,  ,  ].

Nyctotherus spp. is een parasiet of een endosymbiont die het darmstelsel van insecten koloniseert. Gijzen et al. [  ] vond een sterke correlatie tussen de omvang van de N. ovalis- populatie en de carboxymethylcellulase- en filterpapierverterende activiteit in de darmen van kakkerlakken, die gecorreleerd was met het vermogen van die insecten om methaan te produceren. De resultaten van onze studie geven aan dat de ciliaat N. ovalis moet worden beschouwd als commensale microflora van het maag-darmkanaal van de kakkerlak. Nyctotherus spp. werden minder vaak gedetecteerd bij insecten die eerder contact hadden gehad met dieren. Het bovenstaande zou kunnen impliceren dat insecten waarvan het spijsverteringskanaal door deze parasieten wordt gekoloniseerd, gemakkelijker door dieren worden geconsumeerd. Nyctotherus ovalis is zelden pathogeen voor dieren. Satbige et al. [  ] rapporteerde over twee schildpadden waarbij een N. ovalis- infectie diarree, uitdroging en gewichtsverlies veroorzaakte.

Gordiidae, ook bekend als paardenhaarwormen, zijn parasitaire nematoden met een lengte tot 1,5 m die ongewervelde dieren koloniseren. Wanneer ze door insecten worden geconsumeerd, dringen parasitaire larven de darmwand binnen en worden ze omhuld door beschermende cysten in de darmen. Gordius spp. zijn over het algemeen specifiek voor insecten, maar deze nematoden zijn ook bij mens en dier aangetroffen. In de literatuur zijn verschillende gevallen van parasitisme en pseudo-parasitisme door Gordiid-wormen uit verschillende locaties beschreven, waaronder Frankrijk, Italië, Beieren, Dalmatië, Oost-Afrika, Zuidoost-Afrika, West-Afrika, Transvaal, Chili, de Verenigde Staten en Canada [  ] . . Paardenhaarwormen werden ook aangetroffen in braaksel en uitwerpselen [  ,  ]. Geen van de beschreven parasitaire invasies was echter pathogeen voor de mens. In de huidige studie werden parasieten gedetecteerd in insecten die werden gevoederd met keukenafval of lokaal verzamelde voedselbronnen.

Hammerschmidtiella diesigni , Thelastoma spp. en Thelastomatidae zijn nematoden die specifiek zijn voor ongewervelde dieren. Nematoden die het spijsverteringskanaal van insecten koloniseren, worden algemeen beschouwd als commensale organismen. Taylor [  ] toonde aan dat Leidynema spp. oefende een negatief effect uit op de darmweefsels bij insecten. Net als de pathogenen die in onze studie zijn geïdentificeerd, is Leidynema spp. behoren tot de familie Thelastomatidae. Capinera [  ] toonde aan dat deze nematoden de sterfte op kakkerlakkenkwekerijen kunnen verhogen. In onze studie werden insecten gekoloniseerd door H. diesigni en Thelastoma spp. werden gekenmerkt door een lager vetweefselgehalte. McCallister [  ] rapporteerde een hogere prevalentie van H. diesigni- en T. bulhoes- nematoden bij vrouwelijke en volwassen kakkerlakken, maar observeerde geen significante variaties in het aantal hemocyten of het soortelijk gewicht van de hemolymfe [  ].

Steinernema spp. is een entomopathogene nematode waarvan de pathogeniteit verband houdt met de aanwezigheid van symbiotische bacteriën in parasitaire darmen. Deze nematoden worden in de landbouw gebruikt als biologische bestrijdingsmiddelen tegen gewasplagen [  ], die de verspreiding van infecties naar andere insecten kunnen bevorderen. In onze studie werden insecten geïnfecteerd met Steinernema spp. Waarschijnlijk werden ze gevoerd met planten die besmet waren met parasieteieren.

Parasieten die pathogeen zijn voor mens en dier

Cryptosporidium spp. zijn parasieten die het spijsverteringskanaal en de luchtwegen van meer dan 280 gewervelde en ongewervelde soorten koloniseren. Ze zijn in verband gebracht met veel dierziekten waarbij sprake is van chronische diarree [  –  ]. Volgens de literatuur kunnen insecten dienen als mechanische vectoren van deze parasieten. Vliegen kunnen vectoren zijn van Cryptosporidium spp. die oöcysten in hun spijsverteringskanaal vervoeren en voedsel besmetten [  ,  ]. Grondborende mestkevers [  ] en kakkerlakken [  ] kunnen ook fungeren als mechanische vectoren van deze parasieten in het milieu. De prevalentie van Cryptosporidium spp. bij eetbare insecten is in de literatuur niet gedocumenteerd. In onze studie werd Cryptosporidium spp. werden gedetecteerd in het spijsverteringskanaal en andere lichaamsdelen van alle geëvalueerde insectensoorten. Naar onze mening zijn insecten een onderschatte vector van Cryptosporidium spp., en dragen ze aanzienlijk bij aan de verspreiding van deze parasieten.

Isospora spp. zijn kosmopolitische protozoa van de subklasse Coccidia die een darmziekte veroorzaken die bekend staat als isosporiasis. Deze parasieten vormen een bedreiging voor zowel mensen (met name individuen met een onderdrukt immuunsysteem) als dieren. De gastheer raakt geïnfecteerd door de inname van eicellen, en de infectie manifesteert zich voornamelijk met gastro-intestinale symptomen (waterige diarree). Volgens de literatuur kunnen kakkerlakken, huisvliegen en mestkevers fungeren als mechanische vectoren van Isospora spp. [  ,  ]. In ons onderzoek waren insectenkwekerijen besmet met dit protozoa, wat de oorzaak zou kunnen zijn van terugkerende coccidiose bij insecteneters. Isospora spp. werden gedetecteerd op het oppervlak van het lichaam en in de darmkanalen van insecten. Naar onze mening is de aanwezigheid van Isospora spp. bij eetbare insecten is het gevolg van slechte hygiënenormen in insectenkwekerijen.

Balantidium spp. zijn kosmopolitische protozoa van de klasse Ciliata. Sommige soorten vormen een commensale flora van dieren, maar ze kunnen ook een ziekte veroorzaken die bekend staat als balantidiasis. Volgens de literatuur zijn deze protozoën alomtegenwoordig in synantropische insecten [  ,  ]. Bij sommige insecten is Balantidium spp. wordt beschouwd als onderdeel van de normale darmflora en kan deelnemen aan spijsverteringsprocessen [  ]. Insecten kunnen vectoren zijn van Balantidium spp. pathogeen voor mens en dier [  ]. In onze studie werden potentieel pathogene ciliaten gedetecteerd, zelfs in insectenkwekerijen met gesloten habitats.

Entamoeba spp. zijn amoeboïden van de taxonomische groep Amoebozoa die interne of commensale parasieten zijn bij mensen en dieren. Het merendeel van de Entamoeba- soorten, waaronder E. coli , E. dispar en E. hartmanni , geïdentificeerd in onze studie, behoort tot de niet-pathogene commensale darmmicroflora. In het gepresenteerde onderzoek werden echter ook pathogene E. histolytica [  ] en E. invadens gedetecteerd. Entamoeba histolytica kan dysenterie veroorzaken bij mens en dier, terwijl E. invadens vooral gevaarlijk is voor insectenetende dieren zoals reptielen en amfibieën. Andere auteurs hebben aangetoond dat E. histolytica wordt overgedragen door insecten in de natuurlijke omgeving [  ,  ].

Cestoda koloniseert insecten als tussengastheer. Cysticercoids, het larvale stadium van lintwormen zoals Dipylidium caninum , Hymenolepis diminuta , H. nana , H. microstoma , H. citelli , Monobothrium ulmeri en Raillietina cesticillus , zijn geïdentificeerd bij insecten [  –  ]. Insecten hebben immuunmechanismen ontwikkeld die de ontwikkeling van deze parasieten remmen [  ,  ]. Lintwormen kunnen gedragsveranderingen bij insecten veroorzaken, zoals een significante afname van de activiteit en fotofoob gedrag [  ]. Gedragsveranderingen kunnen definitieve gastheren ertoe aanzetten insecten te consumeren die cysticercoïden bevatten. Uit ons onderzoek blijkt dat insectenkwekerijen die worden blootgesteld aan contact met dieren en bedrijven die worden aangevuld met insecten uit externe bronnen een groter risico lopen op lintwormbesmetting. Soortgelijke resultaten werden gerapporteerd in onderzoeken naar synantropische insecten [  ,  ]. In onze studie werden zowel cysticercoïden als eieren gedetecteerd, wat erop wijst dat boerderijen voortdurend kunnen worden blootgesteld aan infectiebronnen. De correlaties tussen eetbare insecten en de prevalentie van taeniasis bij mens en dier zijn echter nooit in detail onderzocht. Er is aangetoond dat de temperatuur de ontwikkeling van lintwormlarven bij insecten aanzienlijk beïnvloedt [  ,  ]. Naar onze mening zou het handhaven van een lagere temperatuur in insectenkwekerijen het voortplantingssucces van lintwormen aanzienlijk kunnen verminderen, en zouden eetbare insecten vóór consumptie thermisch kunnen worden verwerkt om het risico op lintworminfectie te minimaliseren. De resultaten van ons onderzoek geven aan dat eetbare insecten een belangrijke rol spelen bij de overdracht van lintwormen op vogels, insectenetende dieren en mensen.

Pharyngodon spp. zijn parasitaire nematoden die exotische dieren koloniseren in zowel wilde als gevangen omgevingen [  ,  ]. Deze parasieten komen vaker voor bij huisdieren in gevangenschap dan bij wilde dieren [  ,  ], wat gecorreleerd zou kunnen zijn met eetbare insecten. In onze studie waren insecten die eerder contact hadden met dieren significant vaker vectoren van Pharyngodon spp. onze resultaten geven aan dat insecten fungeren als mechanische vectoren voor de overdracht van de ontwikkelingsvormen van de parasiet. De rol van insecten als definitieve gastheren voor Pharyngodon spp. is niet door onderzoek bevestigd. Menselijke infecties veroorzaakt door Pharyngodon spp. waren in het verleden opgemerkt [  ], maar deze nematoden zijn niet langer significante risicofactoren voor mogelijke zoönotische ziekten.

Physaloptera spp. vormen ongeveer 27 dagen na inname cysten in het hemocoel van de gastheer [  ]. Cawthorn en Anderson [  ] hebben aangetoond dat krekels en kakkerlakken kunnen fungeren als tussengastheer voor deze nematoden. Onze studie is het eerste rapport ooit waaruit blijkt dat Physaloptera spp. kan worden overgedragen door meelwormen en treksprinkhanen. Insecten kunnen als vectoren fungeren bij de overdracht van deze parasieten, vooral op insectenetende zoogdieren. Ondanks het bovenstaande zijn definitieve gastheren niet altijd besmet [  ,  ]. Kakkerlakken spelen een belangrijke rol bij de overdracht van de besproken parasieten, waaronder dierentuinen [  ]. Een onderzoek naar experimenteel geïnfecteerde meelkevers ( Tribolium confusum ) toonde aan dat Spiruriden ook het gedrag van insecten kunnen beïnvloeden [  ]. Gedragsveranderingen vergroten het risico dat insecteneters geïnfecteerde individuen selecteren.

Spiruroidea zijn parasitaire nematoden die ongewervelde tussengastheren nodig hebben, zoals mestkevers of kakkerlakken, om hun levenscyclus te voltooien [  ]. Bij sprinkhanen bereikt Spirura infundibuliformis het infectieuze stadium binnen 11-12 dagen bij een omgevingstemperatuur van 20-30°C [  ]. Onderzoek heeft aangetoond dat deze insecten reservoirs van Spiruroidea in de natuurlijke omgeving zijn [  ]. Deze parasieten vormen cysten in insectenspieren, hemocoel en Malpighian tubuli. Ze koloniseren voornamelijk dieren, maar er zijn ook menselijke infecties gemeld. Volgens Haruki et al. [  ], Spiruroidea kan mensen infecteren die per ongeluk tussengastheren consumeren of water drinken dat L3-larven van Gongylonema spp. bevat. (nematoden van de superfamilie Spiruroidea). De prevalentie van Spiruroidea bij insecten is nooit onderzocht bij Midden-Europese insecten. In ons onderzoek werden deze nematoden vooral aangetroffen op bedrijven die insecten van buiten Europa importeerden.

Acanthocephala zijn verplichte endoparasieten van het spijsverteringskanaal bij vissen, vogels en zoogdieren, en hun larven (acanthor, acanthella, cystacant) worden overgedragen door ongewervelde dieren. De prevalentie van deze parasieten bij wilde insecten is nooit onderzocht. Bij kakkerlakken dringen Acanthocephala-soorten zoals Moniliformis dubius en Macracanthorhynchus hirudinaceus de darmwand binnen en bereiken de hemocoel [  ]. Het buitenmembraan van de acanthor vormt microvilli-achtige uitsteeksels die larven in een vroeg stadium omhullen [  ]. De invloed van acanthocephalans op de fysiologie van insecten is uitgebreid onderzocht. De aanwezigheid van Moniliformis moniliformis- larven in kakkerlakkenhemocoel vermindert de immuunreactiviteit [  ], wat naar onze mening kan bijdragen aan secundaire infecties. Doornkopwormen beïnvloeden de concentratie van fenoloxidase, een enzym dat verantwoordelijk is voor de melaninesynthese op de plaats van de verwonding en rond pathogenen in de hemolymfe [  ,  ]. Er zijn geen gepubliceerde onderzoeken die de impact van acanthocephalans op het gedrag van insecten beschrijven. Een onderzoek bij schaaldieren toonde aan dat de ontwikkelingsvormen van deze parasieten het glycogeengehalte aanzienlijk verhoogden en het lipidengehalte bij vrouwtjes verlaagden [  ]. Doornkopwormen brengen ook het voortplantingssucces bij schaaldieren in gevaar [  ]. Verder onderzoek naar geleedpotigen is nodig om de veiligheid van insecten als voedsel- en veevoerbron te bepalen. Acanthocephalans zijn gedetecteerd bij insectenetende reptielen [  ], wat erop zou kunnen wijzen dat insecten kunnen fungeren als vectoren voor de overdracht van parasitaire ontwikkelingsvormen.

Pentastomida zijn endoparasitaire geleedpotigen die de luchtwegen en lichaamsholten van zowel wilde als in gevangenschap levende reptielen koloniseren [  ]. Pentastomiasis wordt beschouwd als een zoönotische ziekte, vooral in ontwikkelingslanden [  ]. Bij de diagnose van pentastomiasis in insectenkwekerijen moet de aanwezigheid van mijten, die bij microscopische waarnemingen op pentastomidennimfen lijken, worden uitgesloten. De rol van insecten van tussengastheren/vectoren van pentastomidennimfen is nog niet volledig opgehelderd.  ] ontdekten echter dat insecten, waaronder mieren, tongwormen kunnen overbrengen en dat kakkerlakken ongevoelig zijn voor infectie met Raillietiella gigliolii . Esslinger [  ] en Bosch [  ] hebben aangetoond dat Raillietiella spp. vertrouwen op insecten als tussengastheer. Onze studie bevestigde de bovenstaande mogelijkheid, maar we waren niet in staat de factoren te identificeren die geselecteerde insecten tot de geprefereerde tussengastheren maken. De keuze van de tussengastheer wordt waarschijnlijk bepaald door de parasietsoort. We waren niet in staat pentastomidenimfen op soortniveau te identificeren vanwege het ontbreken van gedetailleerde morfometrische gegevens. Onze resultaten en de bevindingen van andere auteurs suggereren dat insecten belangrijke vectoren kunnen zijn voor de overdracht van pentastomiden naar reptielen en amfibieën [  ,  ].

Prevalentie

De prevalentie van parasitaire infecties bij insecten is voornamelijk onderzocht in de natuurlijke omgeving. Thyssen et al. [  ] ontdekte dat 58,3% van de Duitse kakkerlakken dragers waren van nematoden, waaronder Oxyuridae-eieren (36,4%), Ascaridae-eieren (28,04%), nematodenlarven (4,8%), andere nematoden (0,08%) en Toxocaridae-eieren (0,08%) . Cestoda-eieren (3,5%) werden ook gedetecteerd in het bovenstaande onderzoek. Chamavit et al. [  ] meldde de aanwezigheid van parasieten bij 54,1% van de kakkerlakken, waaronder Strongyloides stercoralis (0,8%), Ascaris lumbricoides (0,3%), Trichuris trichuria (0,3%), Taenia spp. (0,1%), Cyclospora spp. (1,3%), Endolimax nana (1,3%), B. hominis (1,2%), Isospora belli (9,6%), Entamoeba histolytica / E. dispar (4,6%), Cryptosporidium spp. (28,1%), Chilomastix mesnilli (0,3%), Entamoeba coli (4,0%), Balantidium coli (5,8%) en Iodamoeba butschlii (0,1%). Mensspecifieke parasieten zoals Oxyuridae, Ascaridae, Trichuris spp. en Taenia spp. werden niet gedetecteerd in ons onderzoek, wat suggereert dat de geanalyseerde insecten geen toegang hadden tot de ontlasting van geïnfecteerde mensen. In een onderzoek naar wilde kakkerlakken in Irak was de prevalentie van parasitaire ontwikkelingsvormen bijna tweemaal hoger (83,33%) dan in ons onderzoek [  ]. Iraakse kakkerlakken droegen E. blatti (33%), N. ovalis (65,3%), H. diesingi (83,3%), Thelastoma bulhoe (15,4%), Gordius robuustus (1,3%), Enterobius vermicularis (2%) en Ascaris lumbricoiden (1,3%). Anders dan in ons experiment was H. diesigni de overheersende nematodensoort bij Iraakse kakkerlakken. De geciteerde auteurs hebben geen ontwikkelingsvormen van lintwormen geïdentificeerd. Tsai en Cahill [  ] analyseerden kakkerlakken uit New York en identificeerden Nyctotherus spp. in 22,85% van de gevallen, Blatticola blattae in 96,19% van de gevallen en Hammerschmidtiella diesingi in 1,9% van de gevallen. De resultaten van onze studie suggereren dat gekweekte eetbare insecten minder worden blootgesteld aan bepaalde parasieten (Ascaridae, Enterobiusspp.) die pathogeen zijn voor mens en dier. De afwezigheid van mensspecifieke nematoden en rondwormen kan worden toegeschreven aan het feit dat de geanalyseerde bedrijven gesloten habitats waren zonder toegang tot infectieuze bronnen. In het werk van Fotedar et al. [  ] werd de prevalentie van parasieten vastgesteld op 99,4% bij ziekenhuiskakkerlakken en op 94,2% bij huishoudelijke kakkerlakken. Het percentage geïnfecteerde kakkerlakken was veel hoger dan in ons onderzoek, wat erop zou kunnen wijzen dat omgevingsfactoren de prevalentie van geselecteerde parasietsoorten aanzienlijk beïnvloeden. Onze waarnemingen bevestigen dat het risico op parasitaire infecties aanzienlijk kan worden geminimaliseerd als insecten in een gesloten omgeving worden gekweekt. De hoge prevalentie van geselecteerde ontwikkelingsvormen van parasieten in de geëvalueerde insectenkwekerijen kan worden toegeschreven aan de lage hygiënenormen en het ontbreken van preventieve behandelingen. Parasitaire fauna in insectenkwekerijen is nog nooit op een dergelijke schaal in de literatuur beschreven. Een onderzoek naar kakkerlakken uit de laboratoriumvoorraad van het Wrocław Institute of Microbiology (Polen) onthulde de aanwezigheid van ciliaten bij alle insecten en de aanwezigheid van nematoden bij 87% van de insecten [  ]. Deze resultaten kunnen worden toegeschreven aan het feit dat alle onderzochte insecten uit één enkele stam werden verkregen, wat bijdroeg aan het opnieuw optreden van parasitaire infecties. Soortgelijke waarnemingen werden gedaan in verschillende insectenkwekerijen in het huidige onderzoek.

Het verwerken van eetbare insecten, zoals koken of invriezen, kan parasitaire ontwikkelingsvormen inactiveren. Tanowitz et al. [  ] rapporteerde dat Teania solium wordt gedood door het varkensvlees te koken tot een interne temperatuur van 65°C of het gedurende minstens 12 uur in te vriezen bij 20°C. Roken, pekelen of invriezen van vlees kan ook protozoa zoals Toxoplasma gondii inactiveren [  ]. Het gebruik van magnetrons kan ineffectief zijn [  ]. Aan de hand van het voorbeeld van Anisakis simplex is bewezen dat koken en invriezen de voedselveiligheid in relatie tot dit nematode aanzienlijk kan verbeteren [  ]. Ook het 5 minuten koken van insecten is een efficiënt proces voor het elimineren van Enterobacteriaceae [  ]. Eenvoudige conserveringsmethoden zoals drogen/verzuren zonder gebruik van een koelkast werden getest en als veelbelovend beschouwd [  ]. Er is echter behoefte aan een grondige evaluatie van de methoden voor de verwerking van insecten, inclusief de temperaturen en de tijd van koken/invriezen om mogelijke parasitaire infecties te voorkomen. Ondanks voedselbereidingsprocessen kunnen parasietallergenen nog steeds worden gedetecteerd [  ].

Insecten kunnen ook een bacteriële vector/reservoir zijn, maar momenteel zijn er geen gegevens beschikbaar voor bacteriologische tests bij het kweken van insecten. Het is bewezen dat insecten een belangrijke epidemiologische factor kunnen zijn bij de overdracht van bacteriële ziekten [  ]. Eén van de belangrijkste bacteriën die door insecten worden overgedragen is Campylobacter spp. [  ] en Salmonella spp. [  ]. Kobayashi et al. [  ] toonde aan dat insecten ook een vector kunnen zijn van Escherichia coli 0157:H7. Vrijlevende kakkerlakken herbergden pathogene organismen zoals Escherichia coli , Streptococcus Groep D, Bacillus spp., Klebsiella pneumoniae en Proteus vulgaris [  ]. In vitro-studies hebben aangetoond dat sommige soorten insecten ook het reservoir van Listeria monocytogenes kunnen zijn [  ]. Naar onze mening zou verder onderzoek zich ook moeten richten op de microbiologische veiligheid van de kweek van eetbare insecten.

Vanwege het feit dat de identificatie van parasieten gebaseerd was op morfologische en morfometrische methoden, zou verder moleculair onderzoek zich moeten concentreren op de precieze bepaling van individuele soorten geïdentificeerde parasieten om de werkelijke bedreiging voor de volksgezondheid te bepalen. De resultaten van dit onderzoek geven aan dat eetbare insecten een belangrijke rol spelen in de epidemiologie van parasitaire ziekten bij gewervelde dieren. Eetbare insecten fungeren als belangrijke vectoren voor de overdracht van parasieten op insectenetende huisdieren. Insectenkwekerijen die zich niet aan de hygiënenormen houden of die op ongepaste locaties (bijvoorbeeld huizen) zijn gevestigd, kunnen zowel directe als indirecte risico’s voor mens en dier met zich meebrengen. Daarom moeten boerderijen die eetbare insecten leveren regelmatig worden gecontroleerd op parasieten om de veiligheid van voedsel- en voederbronnen te garanderen. De hoeveelheid parasieten is gerelateerd aan de oorzaak van ziekten bij mens en dier. Daarom moeten in de toekomst kwantitatieve onderzoeken naar de intensiteit van de parasieten in insectenkwekerijen worden uitgevoerd. Naar onze mening zou de Real-Time PCR-methode de meest betrouwbare methode voor kwantitatief onderzoek zijn. Er moeten ook standaarden voor het welzijn van insecten en analytische methoden worden ontwikkeld om productieverliezen tot een minimum te beperken en ziekteverwekkers op boerderijen effectief te elimineren.

Dankbetuigingen

De auteurs willen graag eigenaren van huishoudelijke boerderijen en dierenwinkels bedanken voor het delen van onderzoeksmateriaal.

Financieringsverklaring

De publicatiekosten zullen worden gedekt door het KNOW (Leading National Research Centre) Wetenschappelijk Consortium “Healthy Animal-Safe Food”, besluit van het Ministerie van Wetenschap en Hoger Onderwijs nr. 05-1/KNOW2/2015. De financiers speelden geen rol bij het ontwerp van het onderzoek, het verzamelen en analyseren van gegevens, de beslissing om te publiceren of de voorbereiding van het manuscript.

Beschikbaarheid van data

Alle relevante gegevens staan ​​in het document.

Referenties

1. Hanboonsong Y, Jamjanya T Durst PB. Zespotig vee: kweek van eetbare insecten, verzameling en marketing in Thailand . Voedsel- en Landbouworganisatie van het Regionaal Bureau van de Verenigde Naties voor Azië en de Stille Oceaan, Bangkok; 2013.  ]
2. Sánchez-Muros MJ, Barroso FG, Manzano-Agugliaro F. Insectenmeel als hernieuwbare voedselbron voor dierenvoeding: een overzicht . LJ Clean-prod . 2014; 65 : 16–27. 10.1016/j.jclepro.2013.11.068 [ CrossRef ]  ]
3. Belluco S, Losasso C, Maggioletti M, Alonzi CC, Paoletti MG, Ricci A. Eetbare insecten in een voedselveiligheids- en voedingsperspectief: een kritische beoordeling . Compr Rev Food Sci Food Saf . 2013; 12 : 296–313. 10.1111/1541-4337.12014 [ CrossRef ]  ]
4. Van Huis A, Van Itterbeeck J, Klunder H, Mertens E, Halloran A, Muir G, Vantomme P. Eetbare insecten: toekomstperspectieven voor voedsel- en voederzekerheid (nr. 171) . Voedsel- en Landbouworganisatie van de Verenigde Naties; 2013.  ]
5. Ghaly AE, Alkoaik FN. De gele meelworm als nieuwe eiwitbron . J Agric Biol Sci . 2009; 4 :319–331 10.3844/ajabssp.2009.319.331 [ CrossRef ]  ]
6. Feng Y, Chen XM, Zhao M, Hij Z, Zon L, Wang CY, Ding WF. Eetbare insecten in China: gebruik en vooruitzichten . Insectenwetenschap . 2018; 25 : 184–198. 10.1111/1744-7917.12449 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
7. Anoniem. Over HaoCheng Mealworms Inc. 2013 [geciteerd 22 juni 2018]. In: website van HaoCheng Mealworms Inc. [internet]. Verkrijgbaar via: http://www.hcmealworm.com
8. Siemianowska E, Kosewska A, Aljewicz M, Skibniewska KA, Polak-Juszczak L, Jarocki A, Jedras M. Larven van meelworm ( Tenebrio molitor L.) als Europees nieuw voedingsmiddel . Landbouw Wetenschap . 2013; 4 :287.  ]
9. Bakula T., Obremski K. Galecki R. Tenebrionidae kunnen polystyreen eten INSECTA ® 2016 International Symposium on Insects as Feed, Food en Non-Food; 2016.
10. Sheiman IM, Shkutin MF, Terenina NB, Gustafsson MK. Een gedragsstudie van de kever Tenebrio molitor geïnfecteerd met cysticercoïden van de rattenlintworm Hymenolepis diminuta . Natuurwissenschaften . 2006; 93 : 305–308. 10.1007/s00114-006-0103-4 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
11. Dhakal S, Meyling NV, Williams AR, Mueller-Harvey I, Fryganas C, Kapel CM. Fredensborg BL. Werkzaamheid van gecondenseerde tannines tegen larvale Hymenolepis diminuta (Cestoda) in vitro en in de tussengastheer Tenebrio molitor (Coleoptera) in vivo . Dierenarts Parasitol . 2015; 207 : 49–55. 10.1016/j.vetpar.2014.11.006 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
12. Xie W, Racz GR., Terry BS, Gardner SL. Een methode voor het meten van de hechtingssterkte van de cestode Hymenolepis diminuta aan de rattendarm . J Helminthol . 2016; 91 :1–5. [ PubMed ]  ]
13. DeFoliart GR, Finke MD, Sunde ML. Potentiële waarde van de Mormoonse krekel (Orthoptera: Tettigoniidae) geoogst als eiwitrijk voer voor pluimvee . J Econ Entomol . 1982; 75 : 848–852. 10.1093/jee/75.5.848 [ CrossRef ]  ]
14. Zhong A. Overwegingen bij productontwikkeling voor een voedingsrijke reep met behulp van krekeleiwit ( Aceta domesticus ). Staatsuniversiteit van Californië, Long Beach; 2017.
15. BodenheimerFS. Insecten als menselijk voedsel . Springer; Nederland; 1951.  ]
16. Koning FS, Burgess A., Quinn VJ, Osei AK. Voeding voor ontwikkelingslanden . Oxford Universiteit krant; 2015.  ]
17. Shi WP, Wang YY, Lv F, Guo C, Cheng X. Persistentie van Paranosema (Nosema) locustae (Microsporidia: Nosematidae) onder sprinkhaanpopulaties (Orthoptera: Acrididae) in het Binnen-Mongolië Rangeland, China . BioControle . 2009; 54 : 77–84. 10.1007/s10526-008-9153-1 [ CrossRef ]  ]
18. Fries I, Chauzat MP, Chen YP, Doublet V, Genersch E, Gisder S, Paxton RJ. Standaardmethoden voor Nosema-onderzoek . J. Apiek. Res . 2013; 52 : 1–28. 10.3896/IBRA.1.52.4.19 [ CrossRef ]  ]
19. Fayer R, Morgan U, Upton SJ. Epidemiologie van Cryptosporidium: transmissie, detectie en identificatie . Int J Parasitol . 2000; 30 : 1305–1322. 10.1016/S0020-7519(00)00135-1 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
20. Rueckert S, Simdyanov TG, Aleoshin VV, Leander BS. Identificatie van een uiteenlopende omgevings-DNA-sequentieclade met behulp van de fylogenie van gregarineparasieten (Apicomplexa) van gastheren van schaaldieren . PLoS Eén 2011; 6 :e18163 10.1371/journal.pone.0018163 PMC gratis artikel ] [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
21. Bowman DD. Georgis’ parasitologie voor dierenartsen . Elsevier Gezondheidswetenschappen; 2014.  ]
22. KudoRR. Studies over Nyctotherus ovalis Leidy met bijzondere aandacht voor de nucleaire structuur ervan . Boog Protistenk . 1936; 87 : 10–42.  ]
23. Voge MARIETTA. Studies in cysticercoïde histologie. I. Waarnemingen aan de volledig ontwikkelde cysticercoïde van Hymenolepis diminuta (Cestoda: Cyclophyllidea) . In Proc Helminthol Soc Wash . 1960; 27 : 32–36.  ]
24. Schmidt-Rhaesa A, Hanelt B, Reeves WK. Herbeschrijving en compilatie van Nearctic zoetwater Nematomorpha (Gordiida), met de beschrijving van twee nieuwe soorten . Proc Acad Nat Sci Phila . 2003; 153 : 77–117. 10.1635/0097-3157(2003)153[0077:RACONF]2.0.CO;2 [ CrossRef ]  ]
26. Chitwood BG. Een samenvatting van de nematoden die parasitair zijn in insecten van de familie Blattidae . Parasiet Res . 1932; 5 : 14–50.  ]
27. Bouamer S, Serge M. Beschrijving van Tachygonetria kambesi n. sp. en herbeschrijvingen van vier soorten Tachygonetria Wedl, 1862 (Nematoda: Pharyngodonidae), met een nieuwe diagnose van het geslacht . Systeem Parasitol . 2002; 53 : 121–139. 10.1023/A:1020443905905 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
28. Basir MA. Op een Physaloptera-larve van een insect . Kan J Res . 1948; 26 : 197–200. 10.1139/cjr48d-015 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
29. Anantaraman M, Jayalakshmi N. Over de levensgeschiedenis van Spirocerca lupi (Rudolphi, 1809), een nematode van honden in India . Proc Natl Acad Sci India Sect B Kook Sci . 1963; 58 : 137–147.  ]
30. Gottlieb Y, Markovics A, Klement E, Naor S, Samish M, Aroch I, Lavy E. Karakterisering van Onthophagus sellatus als de belangrijkste tussengastheer van de hondenslokdarmworm Spirocerca lupi in Israël . Dierenarts Parasitol . 2011; 180 : 378–382. 10.1016/j.vetpar.2011.03.008 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
31. Nguyen KB, Smart GC Jr. Morfometrie van infectieuze juvenielen van Steinernema spp. en Heterorhabditis bacteriophora (Nemata: Rhabditida) . J Nematol . 1995; 27 : 206 PMC gratis artikel ] [ PubMed ]  ]
32. Basir MA. Nematoden parasiteren bij Indiase kakkerlakken . Proc Natl Acad Sci India Sect B Biol Sci . 1940; 12 :8–16  ]
33. Ravindranath MH, Anantaraman S. De cystacant van Moniliformis moniliformis (Bremser, 1811) en zijn relatie met de hemocyten van de tussengastheer ( Periplaneta americana ) . Z Parasitenkd . 1977; 53 : 225–237. 10.1007/BF00380467 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
34. McDonald MIJ. Sleutel tot Acanthocephala gerapporteerd bij watervogels . Fish and Wildlife Service Madison Wi Nationaal Wildlife Health Research Center; 1988.  ]
35. Christoffersen ML, De Assis JE. Een systematische monografie van de recente Pentastomida, met een compilatie van hun gastheer Cephalobaena Heymons, 1922 . Zool Meded . 2013; 87 :1–145.  ]
36. Colloff MJ. Taxonomie en identificatie van huisstofmijten . Allergie . 1998; 53 :7–12. 10.1111/j.1398-9995.1998.tb04989.x [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
37. Carter GR, Cole JR Jr. Diagnostische procedure in veterinaire bacteriologie en mycologie . Academische pers; 2012.  ]
38. Zuk M. De effecten van gregarineparasieten op een lang leven, gewichtsverlies, vruchtbaarheid en ontwikkelingstijd in de veldkrekels Gryllus veletis en G. pennsylvanicus . Ecol Entomol . 1987; 12 : 349–354. 10.1111/j.1365-2311.1987.tb01014.x [ CrossRef ]  ]
39. Lopes RB, Alves SB. Effect van Gregarina sp. parasitisme op de gevoeligheid van Blattella germanica voor sommige bestrijdingsmiddelen . J Invertebr Pathol . 2005; 88 : 261–264. 10.1016/j.jip.2005.01.010 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
40. Van der Geest LPS, Elliot SL, Breeuwer J, Beerling EAM. Ziekten van mijten . Exp Appl Acarol . 2000; 24 : 497–560. 10.1023/A:1026518418163 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
41. Johny S, Merisko A, Whitman DW. Werkzaamheid van elf antimicrobiële middelen tegen een gregarineparasiet (Apicomplexa: Protozoa) . Ann Clin Microbiol Antimicrob . 2007; 6:15 10.1186/1476-0711-6-15 PMC gratis artikel ] [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
42. Pong WW, Xu Y., Kunkel JG. Doen Gregorines mee aan astma bij kinderen? 2000 [geciteerd 20 juni 2018]. In: Amherst-website van de Universiteit van Massachusetts [internet]. Massachusetts. Beschikbaar op: http://www.bio.umass.edu/biology/kunkel/gregarine/pong/poster.html
43. Park M, Boys EL, Yan M, Bryant K, Cameron B, Desai A, Thomas PS, Tedia NT. Overgevoeligheid Longontsteking veroorzaakt door huiskrekel, Acheta domesticus . J Clin Celimmunol . 2014; 5 :248 10.4172/2155-9899.1000248 [ CrossRef ]  ]
44. Palmer L. Eetbare insecten als bron van voedselallergenen. Proefschriften, scripties en studentenonderzoek in voedingswetenschappen en -technologie; 2016.
45. Henry J.E. Experimentele toepassing van Nosema locustae voor de bestrijding van sprinkhanen . J Invertebr Pathol . 1971; 18 : 389–394. 10.1016/0022-2011(71)90043-7 [ CrossRef ]  ]
46.​​Ewen AB, Mukerji MK. Evaluatie van Nosema locustae (Microsporida) als bestrijdingsmiddel voor sprinkhanenpopulaties in Saskatchewan . J Invertebr Pathol . 1980; 35 : 295–303. 10.1016/0022-2011(80)90165-2 [ CrossRef ]  ]
47. Lockwood JA, Bomar CR, Ewen AB. De geschiedenis van biologische bestrijding met Nosema locustae: lessen voor sprinkhanenbeheer . Int J Trop Insect Sci . 1999; 19 : 333–350. 10.1017/S1742758400018968 [ CrossRef ]  ]
48. Lange CE, De Wysiecki ML. Het lot van Nosema locustae (Microsporida: Nosematidae) bij Argentijnse sprinkhanen (Orthoptera: Acrididae) . Biol-controle , 1996; 7 : 24–29. 10.1006/bcon.1996.0059 [ CrossRef ]  ]
49. Johnson DL, Pavlikova E. Vermindering van de consumptie door sprinkhanen (Orthoptera: Acrididae) besmet met Nosema locustae Canning (Microsporida: Nosematidae) . J Invertebr Pathol . 1986; 48 : 232–238. 10.1016/0022-2011(86)90128-X [ CrossRef ]  ]
50. KudoRR. Protozoölogie , 4e editie Springfield Thomas III; 1954.  ]
51. Zuk M. De effecten van gregarineparasieten, lichaamsgrootte en tijdstip op de productie van spermatoforen en seksuele selectie bij veldkrekels . Gedrag Ecol Sociobiol . 1987; 21 : 65–72. 10.1007/BF00324437 [ CrossRef ]  ]
52. Marden JH, Cobb JR. Territoriaal en paringssucces van libellen die variëren in spierkracht en aanwezigheid van gregarine-darmparasieten . Animatie Gedrag . 2004; 68 : 857-865. 10.1016/j.anbehav.2003.09.019 [ CrossRef ]  ]
53. Gijzen HJ, van der Drift C, Barugahare M, op ​​den Camp HJ. Effect van gastheerdieet en microbiële samenstelling in de dikke darm op cellulolytische activiteit in de dikke darm van de Amerikaanse kakkerlak, Periplaneta americana . J. Appl. Omgeving. Microbiol . 1994; 60 : 1822–1826. PMC gratis artikel ] [ PubMed ]  ]
54. Satbige AS, Kasaralikar VR, Halmandge SC, Rajendran C. Nyctotherus sp. infectie bij huisdierenschildpadden: een casusrapport . J. Parasiet. Dis . 2016; 42 : 590–592. PMC gratis artikel ] [ PubMed ]  ]
55. Sayad WY, Johnson VM, Faust EC. Menselijke parasitering met Gordius robuustus . JAMA . 1936; 106 : 461–462. 10.1001/jama.1936.92770060001010 [ CrossRef ]  ]
56. BolekMG. Gegevens van paardenhaarwormen Paragordius varius , Chordodes morgani en Gordius robuustus (Nematomorpha) uit Indiana . J Zoetwater Ecol . 2000; 15 : 421–423. 10.1080/02705060.2000.9663760 [ CrossRef ]  ]
57. Hong EJ, Sim C, Chae JS., Kim HC, Park J, Choi KS, Yu DH, Yoo JG, Park BK. Een paardenhaarworm, Gordius sp. (Nematomorpha: Gordiida), doorgegeven in de ontlasting van een hond . Koreaans J Parasitol . 2015; 53 : 719–724. 10.3347/kjp.2015.53.6.719 PMC gratis artikel ] [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
58. TaylorRL. Weefselschade veroorzaakt door een oxyuroïde nematode, Leidynema sp., in de achterdarm van de Madeira-kakkerlak, Leucophaea maderae . J Invertebr Pathol . 1968; 11 : 214–218. 10.1016/0022-2011(68)90151-1 [ CrossRef ]  ]
59. Capinera JL. Encyclopedie van entomologie . Springer wetenschap en zakelijke media; 2008.  ]
60. McCallister GL. Het effect van Thelastoma bulhoesi en Hammerschmidtiella diesingi (Nematoda: Oxyurata) op de gastheergrootte en fysiologie in Periplaneta americana (Arthropoda: Blattidae) . Proc Helminthol Soc Wash . 1988; 55 : 12–14.  ]
61. Cranshaw WS, Zimmerman R. Insectparasitaire nematoden . Uitbreiding Colorado State University; 2005.  ]
62. Panciera RJ, Thomassen RW Garner FM. Cryptosporidiale infectie bij een kalf . Dierenarts Pathol . 1971; 8 : 479–484. 10.1177/0300985871008005-00610 [ CrossRef ]  ]
63. Galecki R, Sokol R. Cryptosporidium canis en C. felis als een potentieel risico voor de mens . Pol J Natuur. Sc . 2015; 30 : 203–212.  ]
64. Galecki R, Sokol R. Behandeling van cryptosporidiose bij in gevangenschap levende groene leguanen ( Iguana iguana ) . Dierenarts Parasitol . 2018; 252 : 17–21. 10.1016/j.vetpar.2018.01.018 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
65. Graczyk TK, Cranfield MR, Fayer R, Bixler H. Huisvliegen (Musca domestica) als transportgastheren van Cryptosporidium parvum . Ben J Trop Med Hyg . 1999; 61 : 500–504. 10.4269/ajtmh.1999.61.500 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
66. Graczyk TK, Grimes BH, Knight R, Szostakowska B, Kruminis-Lozowska W, Racewicz M, Tamang L, Dasilva AJ, Myjak P. Mechanische overdracht van Cryptosporidium parvum oöcysten door vliegen . Wiad Parazytol . 2004; 50 : 243–247. [ PubMed ]  ]
67. Conn DB, Neslund S, Niemeyer R, Tamang L, Graczyk TK. Mestkevers (Insecta: Coleoptera) als verspreiders van levensvatbare Cryptosporidium parvum in een landbouwcomplex met meerdere soorten. Samenvatting 10e Int. Wkshps Opportun-protisten, Boston, MA; 2008.
68. Chamavit P, Sahaisook P, Niamnuy N. De meerderheid van de kakkerlakken uit de provincie Samutprakarn in Thailand zijn dragers van parasitaire organismen . EXCLIJ J. 2011; 10 : 218–222. PMC gratis artikel ] [ PubMed ]  ]
69. Graczyk TK, Ridder R, Gilman RH. Cranfield Mr. De rol van niet-bijtende vliegen in de epidemiologie van infectieziekten bij de mens . Microben infecteren . 2001; 3 : 231–235. 10.1016/S1286-4579(01)01371-5 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
70. Tatfeng YM, Usuanlele MU, Orukpe A, Digban AK, Okodua M, Oviasogie F, Turay AA. Mechanische overdracht van pathogene organismen: de rol van kakkerlakken . J Vect Borne Dis . 2005; 42 : 129–134. [ PubMed ]  ]
71. Golemansky VG, Lipa J, Pilarska DK, Todorov MT. Eencellige parasieten (Protozoa: Eugregarinida, Microsporida & Trychostomatida) van de orthoptere insecten (Insecta: Orthoptera) in Bulgarije . Acta Zool Bulg . 1998; 50 : 123–135.  ]
72. Boucias DG, Pendland JC. Principes van insectenpathologie . Springer wetenschap en zakelijke media; 2012.  ]
73. Adeleke MA, Akatah HA, Hassan AO, Sam-Wobo SO, Famodimu TM, Olatunde GO, Mafiana CF. Implicatie van kakkerlakken als vectoren van gastro-intestinale parasieten in delen van Osogbo, zuidwestelijk Nigeria . Mun Ent Zool . 2012; 7 : 1106–1110.  ]
74. Tanyuksel M, Petri WA. Laboratoriumdiagnose van amebiasis . Clin Microbiol Rev. 2003; 16 : 713–729. 10.1128/CMR.16.4.713-729.2003 PMC gratis artikel ] [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
75. Khan AR, Huq F. Ziekteverwekkers gedragen door vliegen in de stad Dacca . Bangladesh Med Res Council Bull . 1978; 4 : 86–93. [ PubMed ]  ]
76. Luttermoser GW. Meelkeverlarven als tussengastheer van de pluimveelintworm Raillietina cesticillus . Poult Sci . 1940; 19 : 177–179. 10.3382/ps.0190177 [ CrossRef ]  ]
77. Calentine RL, Mackiewicz JS. Monobothrium ulmeri n. sp. (Cestoda: Caryophyllaeidae) van Noord-Amerikaanse Catostomidae . Trans Am Microsc Soc . 1966; 85 : 516–520. 10.2307/3224475 [ CrossRef ]  ]
78. Heyneman D, Voge M. Gastheerreactie van de bloemkever, Tribolium confusum , op infecties met Hymenolepis diminuta , H. microstoma en H. citelli (Cestoda: Hymenolepididae) . J Parasitol . 1971; 57 : 881–886. 10.2307/3277820 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
79. Lackie AM. Immuunmechanismen bij insecten . Parasitol vandaag . 1988; 4 : 98–105. 10.1016/0169-4758(88)90035-X [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
80. Hurd H, Fogo S. Veranderingen veroorzaakt door Hymenolepis diminuta (Cestoda) in het gedrag van de tussengastheer Tenebrio molitor (Coleoptera) . Kan J Zool . 1991; 69 : 2291–2294. 10.1139/z91-321 [ CrossRef ]  ]
81. Jonge PL. Onderzoek naar de overdracht van wormeicellen door kakkerlakken . Proc. Oké, Acad. Wetenschap _ 1975; 55 : 169–174.  ]
82. Hamza H, Mahdi M. Parasieten van kakkerlak Periplaneta americana (L.) in de provincie Al-Diwaniya, Irak . J Thi-Qar Sci . 2010; 2 :1–12.  ]
83. Heyneman D. Effect van temperatuur op de snelheid van ontwikkeling en levensvatbaarheid van de cestode Hymenolepis nana in zijn tussengastheer . Exp Parasitol . 1958; 7 : 374–382. 10.1016/0014-4894(58)90033-X [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
84. Voge M. Waarnemingen over de ontwikkeling en hoge temperatuurgevoeligheid van cysticercoïden van Raillietina cesticillus en Hymenolepis citelli (Cestoda: Cyclophyllidea) . J Parasitol . 1961; 47 : 839–841. [ PubMed ]  ]
85. McAllisterCT. Helminthparasieten van unisexuele en biseksuele zweepstaarthagedissen (Teiidae) in Noord-Amerika. II. De zweepstaart uit New Mexico ( Cnemidophorus neomexicanus ) . J Wildl Dis . 1990; 26 : 403–406. 10.7589/0090-3558-26.3.403 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
86. Saehoong P, Wongsawad C. Helminten in huishagedissen (Reptilia: Gekkonidae) . Zuidoost-Aziatische J Trop Med . 1997; 28 : 184–189. [ PubMed ]  ]
87. Sianto L, Teixeira-Santos I, Chame M, Chaves SM, Souza SM, Ferreira LF. Reinhard K, Araujo A. Hagedissen eten: een duizendjarige gewoonte bewezen door de paleoparasitologie . BMC Res-notities 2012; 5 :586 10.1186/1756-0500-5-586 PMC gratis artikel ] [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
88. Alicata, JE. Larvale ontwikkeling van de spiruride nematode, Physaloptera turgida , in de kakkerlak, Blattella germanica . Papers over helminthologie 1937: 11-14.
89. Cawthorn RJ, Anderson RC. Cellulaire reacties van veldkrekels ( Achetapennsylvanicus Burmeister ) en Duitse kakkerlakken (Blatella germanica L.) op Physaloptera maxillaris Molin (Nematoda: Physalopteroidea) . Kan J Zool . 1977; 55 : 368–375. 10.1139/z77-050 [ CrossRef ]  ]
90. Montali RJ, Gardiner CH, Evans RE, Bush RM. Pterygodermatites nycticebi (Nematoda: Spirurida) in Gouden Leeuw tamarins . Lab Anim Sci . 1983; 33 : 194–197. [ PubMed ]  ]
91. Schutgens M, Kok B, Gilbert F, Behnke JM. Gedragsveranderingen bij de bloemkever Tribolium confusum geïnfecteerd met de spiruride nematode Protospirura muricola . J Helminthol . 2015; 89 :68–79. 10.1017/S0022149X13000606 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
92. Bowman DD. Inwendige parasieten Beheer van infectieziekten in dierenasielen . Ames: Wiley-Blackwell Publishing, 209–222;2009.  ]
93. Anderson RC, Barnes ET, Bartlett CM. Heronderzoek van Spirura infundibuliformis McLeod, 1933 (Nematoda: Spiruroidea) van Spermophilus richardsonii , met observaties over de ontwikkeling ervan bij insecten . Kan J Zool . 1993; 71 : 1869-1873. 10.1139/z93-266 [ CrossRef ]  ]
94. Chabaud AG. De evolutiecyclus van de Spirurides en de Nématoden kan een vergelijkbare biologie bieden. Valeur-systeem voor biologische karakters . Ann Parasitol. Hum Comp . 1954; 29 : 42–88. [ PubMed ]  ]
95. Haruki K, Furuya H, Saito S, Kamiya S, Kagei N. Gongylonema-infectie bij de mens: een eerste geval van gongylonemose in Japan . Helminthologie . 2005; 42 :63–66.  ]
96. Robinson ES, Strickland BC. Cellulaire reacties van Periplaneta americana op acanthocephalan-larven . Exp Parasitol . 1969; 26 : 384–392. 10.1016/0014-4894(69)90132-5 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
97. Rotheram S, Crompton DWT. Waarnemingen over de vroege relatie tussen Moniliformis dubius (Acanthocephala) en de hemocyten van de tussengastheer, Periplaneta americana . Parasitologie . 1972; 64 : 15–21. 10.1017/S0031182000044607 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
98. Lackie AM, Holt R. Immunosuppressie door larven van Moniliformis moniliformis (Acanthocephala) in hun kakkerlakkengastheer ( Periplaneta americana ) . Parasitologie . 1989; 98 : 307–314. 10.1017/S0031182000062235 [ CrossRef ]  ]
99. Volkmann A. Lokalisatie van fenoloxidase in de middendarm van Periplaneta americana geparasiteerd door larven van Moniliformis moniliformis (Acanthocephala) . Parasitol Res . 1991; 77 : 616–621. 10.1007/BF00931025 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
100. Eleftherianos I, Revenis C. Rol en belang van fenoloxidase bij hemostase van insecten . J Aangeboren immuunsysteem . 2011; 3 : 8–33. 10.1159/000321931 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
101. Plaistow SJ, Troussard JP, Cézilly F. Het effect van de acanthocephalan-parasiet Pomphorhynchus laevis op het lipide- en glycogeengehalte van zijn tussengastheer Gammarus pulex . Int J Parasitol . 2001; 31 : 346–351. 10.1016/S0020-7519(01)00115-1 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
102. Bollache L, Rigaud T, Cézilly F. Effecten van twee acanthocephalan-parasieten op de vruchtbaarheid en paringsstatus van vrouwelijke Gammarus pulex (Crustacea: Amphipoda) . J Invertebr Pathol . 2002; 79 : 102–110. 10.1016/S0022-2011(02)00027-7 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
103. Mannetjes LR. Acanthocephalans van enkele kikkers en padden (Anura) en kameleons (Squamata) uit Tanzania met de beschrijving van een nieuwe soort . J Parasitol . 2005; 91 : 1459–1464. 10.1645/GE-550R1.1 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
104. Galecki R, Sokol R, Dudek A. Tongworm (Pentastomida) infectie bij balpythons ( Python regius ) – een casusrapport . Ann Parasitol . 2016; 62 : 363–365. 10.17420/ap6204.76 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
105. Ayinmode AB, Adedokun AO, Aina A, Taiwo V. De zoönotische implicaties van pentastomiasis in de koninklijke python ( Python regius ) . Ghana Med J. 2010; 44 : 116–118. PMC gratis artikel ] [ PubMed ]  ]
106. Winch JM, Riley J. Experimentele studies naar de levenscyclus van Raillietiella gigliolii (Pentastomida: Cephalobaenida) in de Zuid-Amerikaanse wormhagedis Amphisbaena alba : een unieke interactie waarbij twee insecten betrokken zijn . Parasitologie . 1985; 9 : 471–481. 10.1017/S0031182000062715 [ CrossRef ]  ]
107. Esslinger JH. Ontwikkeling van Porocephalus crotali (Humboldt, 1808) (Pentastomida) in experimentele tussengastheren . J Parasitol . 1962; 48 : 452–456. 10.2307/3275214 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
108. Bosch H. Experimentele levenscyclusstudies van Raillietiella Sambon , 1910 (Pentastomida: Cephalobaenida): de larve in het vierde stadium is infectieus voor de definitieve gastheer . Z Parasitenkd . 1986; 72 : 673–680. 10.1007/BF00925489 [ CrossRef ]  ]
109. Ali JH, Riley J. Experimentele levenscyclusstudies van Raillietiella gehyrae Bovien, 1927 en Raillietiella frenatus Ali, Riley en Self, 1981: pentastomide parasieten van gekko’s die insecten als tussengastheer gebruiken . Parasitologie . 1983; 86 : 147–160. 10.1017/S0031182000057255 [ CrossRef ]  ]
110. Thyssen PJ, Moretti TDC, Ueta MT, Ribeiro OB. De rol van insecten (Blattodea, Diptera en Hymenoptera) als mogelijke mechanische vectoren van wormen in de thuis- en peridomiciliaire omgeving . Cad Saude Publica . 2004; 20 : 1096–1102. [ PubMed ]  ]
111. Tsai YH, Cahill KM. Parasieten van de Duitse kakkerlak ( Blattella germanica L.) in de stad New York . J Parasitol . 1970; 56 : 375–377. 10.2307/3277678 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
112. Fotedar R, Shriniwas UB, Verma A. Kakkerlakken ( Blattella germanica ) als dragers van micro-organismen van medisch belang in ziekenhuizen . Epidemiol-infectie . 1991; 107 : 181–187. 10.1017/s0950268800048809 PMC gratis artikel ] [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
113. Gabryelow K, Lonc E. Parasieten van Periplaneta americana uit een laboratoriumcultuur . Wiad Parazytol . 1986; 32 : 75–78. [ PubMed ]  ]
114. Tanowitz HB, Weiss LM, Wittner M. Lintwormen . Curr Infect Dis Rep . 2001; 3 : 77–84. 10.1007/s11908-001-0062-z [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
115. Lunden A, Uggla A. Infectiviteit van Toxoplasma gondii bij schapenvlees na uitharden, roken, invriezen of koken in de magnetron . Int J Voedselmicrobiol . 1992; 15 : 357–363. 10.1016/0168-1605(92)90069-F [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
116. Rodriguez-Mahillo AI, Gonzalez-Munoz M, de las Heras C, Tejada M, Moneo I. Kwantificering van Anisakis simplex- allergenen in verse, langdurig ingevroren en gekookte visspier . Door voedsel overgedragen ziekteverwekker Dis . 2010; 7 : 967–973. 10.1089/fpd.2009.0517 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
117. Klunder HC, Wolkers Rooijackers J, Korpela JM, Nout MJR. Microbiologische aspecten van verwerking en opslag van eetbare insecten . Voedselcontrole . 2012; 26 ( 2 ):628–631. 10.1016/j.foodcont.2012.02.013 [ CrossRef ]  ]
118. Wales AD, Carrique Mas JJ, Rankin M, Bell B, Thind BB, Davies RH. Overzicht van het vervoer van zoönotische bacteriën door geleedpotigen, met bijzondere aandacht voor Salmonella bij mijten, vliegen en strooikevers . Zoönosen Volksgezondheid . 2010; 57 : 299–314. 10.1111/j.1863-2378.2008.01222.x [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
119. Goodwin MA, Waltman WD. Overdracht van Eimeria , virussen en bacteriën op kuikens: duistere kevers ( Alphitobius diaperinus ) als vectoren van ziekteverwekkers . J Appl Poult Res . 1996; 5 : 51–55. 10.1093/japr/5.1.51 PMC gratis artikel ] [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
120. Kobayashi M, Sasaki T, Saito N, Tamura K, Suzuki K, Watanabe H, Agui N. Huisvliegen: geen eenvoudige mechanische vectoren van enterohemorragische Escherichia coli O157: H7 . Ben J Trop Med Hyg . 1999; 61 : 625–629. 10.4269/ajtmh.1999.61.625 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
121. Zarchi AAK, Vatani H. Een onderzoek naar soorten en prevalentie van bacteriële agentia geïsoleerd uit kakkerlakken in drie ziekenhuizen . Vector gedragen zoönotische dis . 2009; 9 : 197–200. 10.1089/vbz.2007.0230 [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]
122. Martinez MR, Wiedmann M, Ferguson M, Datta AR. Beoordeling van de virulentie van Listeria monocytogenes in het Galleria mellonella insectenlarvenmodel . PloS één . 2017; 12 :e0184557 10.1371/journal.pone.0184557 PMC gratis artikel ] [ PubMed ] [ CrossRef ]  ]

 

bron  hier de pdf voor als ze het artikel verwijderen   Een parasitologische evaluatie van eetbare insecten en hun rol in de overdracht van parasitaire ziekten op mens en dier – PMC